端粒(即染色體末端)的發(fā)現(xiàn)已有很長(zhǎng)的歷史,但對(duì)其結(jié)構(gòu)、功能、合成及其重要意義的認(rèn)識(shí),近年來有了很大進(jìn)展。本文就端粒、端粒酶的研究進(jìn)展以及他們與腫瘤的關(guān)系綜述如下。
一、端粒
(一)端粒的結(jié)構(gòu)
端粒是位于染色體3′末端的一段富含G的DNA重復(fù)序列,端粒和端粒結(jié)合蛋白組成核蛋白復(fù)合物,廣泛存在于真核生物細(xì)胞中,具有特殊的功能。不同種類細(xì)胞的端粒重復(fù)單位不同,大多數(shù)長(zhǎng)5~8bp,由這些重復(fù)單位組成的端粒,突出于其互補(bǔ)鏈12~16個(gè)核苷酸內(nèi)[1]。人類端粒由5′TTAGGG3′的重復(fù)單位構(gòu)成,長(zhǎng)度在5~15kb范圍[1,2]。與端粒特異性結(jié)合的是端粒結(jié)合蛋白,迄今為止,只在少數(shù)生物中確定了端粒結(jié)合蛋白的結(jié)構(gòu)及表達(dá)基因,然而端粒結(jié)構(gòu)與功能的保守性表明,這些端粒結(jié)合蛋白的特性可能普遍適用于其他真核生物。Chong等[3]在人類細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)了一種端粒結(jié)合蛋白,但人類染色體末端的DNA-蛋白復(fù)合體的結(jié)構(gòu)還不清楚。
(二)端粒的功能
端粒高度的保守性表明,端粒具有非常重要的作用。其主要功能包括:
1.保護(hù)染色體末端:真核生物的端粒DNA-蛋白復(fù)合物,如帽子一般,保護(hù)染色體末端免于被化學(xué)修飾或被核酶降解,同時(shí)可能還有防止端粒酶對(duì)端粒進(jìn)行進(jìn)一步延伸的作用[1]。改變端粒酶的模板序列將導(dǎo)致端粒的改變,從而誘導(dǎo)細(xì)胞衰老和死亡[4]。
2.防止染色體復(fù)制時(shí)末端丟失:細(xì)胞分裂、染色體進(jìn)行半保留復(fù)制時(shí),存在染色體末端丟失的問題[5]。隨著細(xì)胞的不斷分裂,DNA丟失過多,將導(dǎo)致染色體斷端彼此發(fā)生融合,形成雙中心染色體、環(huán)狀染色體或其他不穩(wěn)定形式。端粒的存在可以起到緩沖保護(hù)的作用,從而防止染色體在復(fù)制過程中發(fā)生丟失或形成不穩(wěn)定結(jié)構(gòu)[1]。
3.決定細(xì)胞的壽命:染色體復(fù)制的上述特點(diǎn)決定了細(xì)胞分裂的次數(shù)是有限的,端粒的長(zhǎng)度決定了細(xì)胞的壽命,故而被稱為“生命的時(shí)鐘”[6]。
4.固定染色體位置:染色體的末端位于細(xì)胞核邊緣,人類端粒DNA和核基質(zhì)中的蛋白相互作用,以′TTAGGG′結(jié)構(gòu)附著于細(xì)胞核基質(zhì)(包括nuclear envelope和internal protein)[3]。
(三)端粒的長(zhǎng)度
端粒的長(zhǎng)度在不同的細(xì)胞之間存在著差異。胚胎細(xì)胞和生殖細(xì)胞端粒的長(zhǎng)度大于體細(xì)胞[7]。體外培養(yǎng)細(xì)胞端粒的長(zhǎng)度隨著細(xì)胞逐代相傳而縮短,每復(fù)制一代即有50~200nt的DNA丟失,端粒丟失到一定程度即失去對(duì)染色體的保護(hù)作用,細(xì)胞隨之發(fā)生衰老和死亡。所以,通過測(cè)定端粒的長(zhǎng)度可以預(yù)測(cè)細(xì)胞的壽命[6]。人體細(xì)胞端粒的長(zhǎng)度不一,存在著個(gè)體差異,隨著年齡的增長(zhǎng),端粒每年減少約15~40 nt[7],最終細(xì)胞衰老。胚胎細(xì)胞和生殖細(xì)胞端粒的長(zhǎng)度不隨著細(xì)胞分裂次數(shù)的增加而縮短,具有無限分裂的能力,其原因就在于端粒酶的存在[7]。
二、端粒酶
(一)端粒酶的結(jié)構(gòu)和功能
端粒酶是由端粒酶RNA和蛋白質(zhì)組成的核糖核蛋白酶,通過識(shí)別并結(jié)合于富含G的端粒末端,以自身為模板,逆轉(zhuǎn)錄合成端粒[1]。
1995年,Junli等[8]克隆了人類端粒酶RNA基因,在長(zhǎng)約450個(gè)堿基的人端粒酶RNA(hTR)序列中,有一段長(zhǎng)11個(gè)核苷酸的區(qū)域(5′-CUAACCCUAAC-3′),與人端粒序列(TTAGGG)n互補(bǔ),發(fā)生在該模板區(qū)域的hTR突變將導(dǎo)致端粒酶功能的改變。
端粒酶蛋白質(zhì)成分的分離十分困難,直到1995年,Greider等[9]才純化并克隆了四膜蟲端粒酶的兩個(gè)多肽成分,即p80和p95。1997年,人們克隆并描述了兩種人類端粒酶蛋白TP 1(telomerase associated protein 1)[10]和TP 2(telomerase associated protein 2或hTRT)[1 1]。其中TP 1與四膜蟲端粒酶蛋白p80同源,能與端粒酶RNA特異性結(jié)合;TP 2與啤酒酵母S.cerevisiae的端粒酶蛋白Est2p同源,和逆轉(zhuǎn)錄酶的結(jié)構(gòu)相似,是端粒酶的催化亞單位,在腫瘤細(xì)胞端粒酶的激活中起關(guān)鍵作用[12]。
四膜蟲端粒酶RNA及其兩個(gè)多肽成分(p80, p95)是組成端粒酶的唯一必要成分,鑒于端粒酶在進(jìn)化中的保守性,hTR和TP 1、TP 2是否構(gòu)成了完整的人類端粒酶,目前尚無定論。
(二)端粒酶活性的調(diào)節(jié)
端粒酶的活性在不同的層次上受到各種因素的調(diào)節(jié)。
1.hTR: hTR是端粒酶的重要成分,在體外培養(yǎng)的HeLa細(xì)胞中轉(zhuǎn)染反義端粒酶RNA,將導(dǎo)致端粒DNA的縮短和腫瘤細(xì)胞的死亡[8]。但許多研究表明,hTR的水平并不能代表端粒酶活性水平,缺乏端粒酶活性的細(xì)胞同樣可以有hTR的表達(dá)?梢姸肆C窻NA并不是調(diào)節(jié)端粒酶活性的唯一因素[13]。
2.端粒酶蛋白:TP 1或TP 2基因的突變,均可導(dǎo)致端粒酶的失活[10,11],TP 2基因在不同的細(xì)胞有不同的剪切位點(diǎn),可能以此改變TP 2的生化特性,從而起重要的調(diào)節(jié)作用[14]。
3.癌基因與抑癌基因:癌基因和抑癌基因?qū)δ[瘤的發(fā)生、發(fā)展起著重要的作用。Wright等[15]根據(jù)體外培養(yǎng)細(xì)胞的永生化過程提出了腫瘤發(fā)生的M1/M2模型,即細(xì)胞經(jīng)過有限次的分裂后進(jìn)入M1期,細(xì)胞衰老走向死亡,抑癌基因p53或Rb的突變等使細(xì)胞逃脫生長(zhǎng)控制的機(jī)理使細(xì)胞渡過M1期,再次經(jīng)過若干次的分裂,進(jìn)入M2期,少數(shù)細(xì)胞發(fā)生端粒酶的激活成為永生細(xì)胞,此時(shí)仍然需要p53或Rb的突變存在。有研究報(bào)道,使缺乏抑癌基因p53/Rb的腫瘤表達(dá)Rb蛋白(pRb),細(xì)胞停滯在G0/G1期并發(fā)生老化現(xiàn)象,抑制pRb后細(xì)胞重新開始合成DNA,但大多數(shù)細(xì)胞在分裂中死亡,p53無此現(xiàn)象[16]。另一項(xiàng)關(guān)于卵巢癌的研究提示,p53與端粒酶活性無關(guān)[17]。抑癌基因與端粒酶的關(guān)系并不明確。
4.細(xì)胞分化及細(xì)胞周期對(duì)端粒酶活性的影響:用藥物誘導(dǎo)的細(xì)胞分化實(shí)驗(yàn)表明,隨著細(xì)胞分化,端粒酶活性隨之降低,而抗分化的細(xì)胞則無影響[18],永生細(xì)胞株端粒酶的活性在各細(xì)胞周期中無顯著變化,而與細(xì)胞的生長(zhǎng)速度相關(guān)[19],使細(xì)胞脫離生長(zhǎng)周期能否抑制端粒酶的活性,各報(bào)道不一[18,19]。然而,作出端粒酶活性與細(xì)胞周期無關(guān)的結(jié)論為時(shí)尚早,細(xì)胞的生長(zhǎng)、分化與端粒酶活性調(diào)節(jié)間的關(guān)系,還有待于研究。
5.端粒的長(zhǎng)度與端粒酶激活:當(dāng)端?s短到一定程度后才有端粒酶的激活,其機(jī)理可能在于,縮短的端粒導(dǎo)致基因的不穩(wěn)定,某些突變?nèi)缂せ疃肆C、丟失抑癌基因使細(xì)胞獲得不死性,成為優(yōu)勢(shì)克隆。端粒的縮短成為端粒酶激活的前提[20]。但此理論不能解釋某些腫瘤細(xì)胞中端粒較長(zhǎng)的現(xiàn)象。
端粒酶活性的調(diào)節(jié)機(jī)理錯(cuò)綜復(fù)雜、說法不一,胚胎早期端粒酶的活性隨著胚胎的發(fā)育而逐漸消失(生殖細(xì)胞例外),而細(xì)胞獲得不死性及腫瘤的發(fā)生,又與端粒酶的再次激活密切相關(guān),其機(jī)理目前還不清楚。
三、端粒、端粒酶與腫瘤
(一)端粒、端粒酶與人類腫瘤的關(guān)系
正常細(xì)胞的分裂次數(shù)是有限的。端粒酶的激活是細(xì)胞走向永生化的必要途徑,而永生化又被認(rèn)為是腫瘤惡化的必要步驟。腫瘤細(xì)胞的端粒長(zhǎng)度很短,其繼續(xù)縮短將導(dǎo)致染色體融合、細(xì)胞死亡,而端粒酶的激活可以維持端粒的長(zhǎng)度,從而維持腫瘤的繼續(xù)分裂、增殖和生存[21]。端粒酶的表達(dá),可能是腫瘤形成和發(fā)展的共同途徑。
人類細(xì)胞端粒酶活性水平較低,以及很難獲得大量的腫瘤標(biāo)本,使得早期對(duì)人類端粒酶的研究受到了很大限制。1994年,Kim等[22]創(chuàng)立了測(cè)定端粒酶活性的telomere repeat amplification protocol(TRAP)法,用裂解緩沖液代替原低滲液,提高了細(xì)胞的裂解程度,并引入聚合酶鏈反應(yīng)(PCR),使反應(yīng)的靈敏性提高了104倍。至今已在大多數(shù)人類惡性腫瘤中測(cè)到了端粒 酶的活性。有些實(shí)驗(yàn)表明,端粒酶的活性與某些腫瘤的惡性程度和預(yù)后相關(guān)[17,21]。端粒酶在惡性腫瘤發(fā)展中的作用日益明晰[21]。
(二)端粒酶在婦科腫瘤方面的研究
大多數(shù)婦科惡性腫瘤有端粒酶的表達(dá)[23]。由于卵巢含生殖細(xì)胞成分,子宮內(nèi)膜周期性脫落具有再生能力,使得端粒酶具有不同于一般組織的特殊性。
1.卵巢腫瘤:良性卵巢腫瘤(如生殖細(xì)胞腫瘤、乳頭狀囊腺瘤)、交界性腫瘤及絕經(jīng)前正常卵巢可測(cè)出端粒酶活性。但在惡性卵巢癌、低分化卵巢腫瘤及有淋巴轉(zhuǎn)移者,端粒酶活性顯著增高。初步的研究表明,端粒酶活性與上皮性卵巢癌的發(fā)展及蔓延相關(guān)[17,24]。腹水細(xì)胞的結(jié)果并不一致,有報(bào)道認(rèn)為,端粒酶的陽性率不高[23]。
2.子宮內(nèi)膜癌:端粒酶在子宮內(nèi)膜癌中表現(xiàn)為強(qiáng)陽性,同時(shí)正常子宮內(nèi)膜可以有端粒酶活性,絕經(jīng)前甚至可表現(xiàn)為強(qiáng)陽性。有關(guān)研究未發(fā)現(xiàn)端粒酶活性與腫瘤的分期、浸潤(rùn)的深度及DNA的成分相關(guān)[25]。這與子宮內(nèi)膜的周期性再生有關(guān)。
3.宮頸癌:有研究表明,端粒酶的激活發(fā)生在宮頸癌的早期,與其進(jìn)展有關(guān),有希望成為宮頸癌診斷及預(yù)后的標(biāo)記物[26]。雖然絕大多數(shù)宮頸癌端粒酶陽性,但在正常宮頸及宮頸上皮內(nèi)瘤樣變中的陽性率報(bào)道不一。Zheng等[26]的研究結(jié)果為,宮頸脫落細(xì)胞涂片的端粒酶陽性率分別為7%及40%,而Gorham等[23]報(bào)道的陽性率為0%。
(三)臨床應(yīng)用前景
1.腫瘤的治療方面:端粒酶與惡性腫瘤之間令人驚異的相關(guān)性,使他在腫瘤的診斷和治療上有望成為行之有效的新的靶目標(biāo)。因?yàn)槎肆C钢饕嬖谟趷盒阅[瘤,而在大多數(shù)正常組織中沒有活性或活性極低,同時(shí)由于端粒酶在惡性腫瘤的發(fā)生,尤其是在腫瘤的發(fā)展中起著關(guān)鍵的作用[21]。所以,通過各種途徑抑制端粒酶的活性,可能將有效地抑制大多數(shù)腫瘤的生長(zhǎng),而對(duì)大多數(shù)正常細(xì)胞沒有影響。這種抑制作用可以通過直接抑制端粒酶活性、抑制端粒酶RNA(如導(dǎo)入反義核酸),或端粒酶蛋白成分以及誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生分化等方法實(shí)現(xiàn)。
2.診斷與鑒別診斷及臨床預(yù)后方面:端粒酶可以出現(xiàn)在某些腫瘤的早期甚至癌前病變,在分化低有轉(zhuǎn)移傾向的腫瘤中高度表達(dá),使其在診斷及評(píng)價(jià)預(yù)后方面,具有一定價(jià)值。
在人類端粒及端粒酶的基礎(chǔ)研究中,還存在著許多問題,有待進(jìn)一步研究,如人類端粒末端的精細(xì)結(jié)構(gòu),端粒的非端粒酶延伸機(jī)理;人類端粒酶的具體結(jié)構(gòu)及其基因所在的位置;端粒酶的激活機(jī)理及其活性調(diào)節(jié);端粒酶在腫瘤的發(fā)生中的作用;如何有效地抑制端粒酶活性;缺乏端粒酶活性的腫瘤的生長(zhǎng)機(jī)理等?傊肆、端粒酶在腫瘤的研究中具有廣闊的前景,將為人類攻克腫瘤開辟新的視野。
參考文獻(xiàn)
[1] Rhyu MS. Telomeres, telomerase,and immortality. J Natl Cancer Inst, 1995,87:884-894.
[2] Moyzis RK, Buckingham JM, Cram LS, et al. A highly conserved repetitive DNA sequence, (TTAGGG) n, present at the telomeres of human chromosomes. Proc Natl Acad Sci USA, 1988, 85:6622-6626.
[3] Chong L, van Strrnsel B, Broccoli D, et al. A&n bsp;human telomeric protein. Science, 1995, 270:1663-1667.
[4] Marusic L, Anton M, Tidy A, et al. Reprogramming of telomerase by expression of mutant telomerase RNA template in human cells leads to altered telomeres that correlate with reducde cell viability. Mol Cell Biol, 1997, 17:6394-6401.
[5] Watson. Origin of concatemeric T7 DNA. Nature New Biol, 1972,239:197-201.
[6] Harly CB, Futcher AB, Greider CW. Telomeres shorten during aging of human fibroblasts. Nature, 1990,345:458-460.
[7] Allsopp RC, Vaziri H, Patterson C, et al. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts. Proc Natl Acad Sci USA, 1992, 89:10114-10118.
[8] Feng J, Funf WD, Wang SS, et al. The RNA component of human telomerase. Science, 1995,269:1236-1241.
[9] Greider CW, Autexier C, Buchkovich K, et al. Telomerase biochemistry and regulation in cellular immortalization. Proc Am Assoc Cancer Res, 1995, 36:672-677.
[10] Harrington L, McPhail T, Mar V, et al. A mammalian telomerase-associated protein. Science, 1997, 275:973-977.
[11] Harrington L, Zhou W, McPhail T, et al. Human&nbs p;telomerase contains evolutionarily conserved catalytic and structural subunits. Genes Dev, 1997,11:3109-3115.
[12] Nakayama J, Tahara H, Tahara E, et al. Telomerase activition by hTRT in human normal fibroblasts and hepatocellular carcinomas. Nat Genet, 1998,18:65-68.
[13] Avilion AA, Piatyszek MA, Gupta J, et al: Human telomerase RNA and telomerase activity in immortal cell-lines and tumor tissues. Cancer Res, 1996,56:645-650.
[14] Kilian A, Bowtell DD, Abud HE, et al. Isolation of a candidate human telomerase catalytic subunit gene, which reveals complex splicing patterns in different cell types. Hum Mol Genet, 1997,6:2011-2109.
[15] Wright WE, Shay JW. Telomere positional effects and the regulatiom of cellular senscence. Trends Genet, 1992,8:193-197.
[16] Xu HJ, Zhou Y, Ji W, et al. Reexpression of the retinoblastoma protein in tumor cells induces senescence and telomerase inhibition. Oncogene, 1997,15:2589-2596.
[17] Oishi T, Kigawa J, Minagawa Y, et al. Alteration of telomerase activity associated with development and extension of epithelial ovarian cancer. Obstet Gynecol,1998, 91:568-571.
[ 18] Sharma HW, Sokoloski JA, Perez JR, et al. Differentiation of immortal cells inhibits telomerase activity. Proc Natl Acad Sci USA,1995,92:12343-12346.
[19] Holt SE, Aisner DL, Shay JW, et al. Lack of cell cycle regulation of telomerase activity in human cells.Proc Natl Acad Sci USA, 1997, 94:10687-10692.
[20] Ishikawa F. Telomere crisis, the driving force in cancer cell evolution. Biochem Biophy Res Com, 1997,230:1-6.
[21] Blasco MA, Lee HW, Hande MP, et al. Telomere shortening and tumor formation by mouse cells lacking telomerase RNA. Cell, 1997,91:25-34.
[22] Kim NW, Piatyszek MA, Prowse KR, et al. Specific association of human telomerase activity with immortal cells and cancer. Science, 1994, 266:2011-2015.
[23] Gorham H, Yoshida K, Sugino T, et al. Telomerase activity in human gynaecological malignancies. J Clin Pathol, 1997, 50:501-504.
[24] Murakami J, Nagai N, Ohama K, et al. Telomerase activity in ovarian tumors. Cancer, 1997, 80:1085-1092.
[25] Brien TP, Kallakury BV, Lowry CV, et al. Telomerase activity in benign endometrium and endometrial carcinoma. Canc er Res, 1997, 57:2760-2764.
[26] Zheng PS, Iwasaka T, Yokoyama M, et al. Telomerase activation in in vitro and in vivo cervical carcinogenesis. Gynecol Oncol, 1997,66:222-226.
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