一、非特異性染色的主要因素
組織的非特異性染色的機理很復雜,其產(chǎn)生的原因主要可分為以下幾點:
。1)一部分熒光素未與蛋白質(zhì)結(jié)合,形成了聚合物和衍化物,而不能被透析除去。
。2)抗體以外的血清蛋白與熒光素結(jié)合形成熒光素脲蛋白,可與組織成分結(jié)合。
。3)除去檢查的抗原以外,組織中還可能存在類屬抗原(如Forssman氏抗原),可與組織中特異性抗原以外之之相應抗體結(jié)合。
。4)從組織中難于提純抗原性物質(zhì),所以制備的免疫血清中往往混雜一些抗其他組織成分的抗體,以致容易混淆。
(5)抗體分子上標記的熒光素分子太多,這種過量標記的抗體分子帶過多的陰離子,可吸附于正常組織上而呈現(xiàn)非特異性染色。
。6)熒光素不純,標本固定不當?shù)取?/P>
二、消除非特異性染色的方法
消除熒光抗體非特異性染色的方法應根據(jù)產(chǎn)生的原因采取適當?shù)姆椒ǎS玫姆椒ㄓ幸韵聨追N:
。ㄒ)動物臟器粉末吸收法
常用肝粉(豬、大白鼠或小白鼠),其次是骨髓粉、鼠腦粉和雞胚粉等。每毫升熒光抗體中加入肝粉50~100mg,在離心管中充分混勻,在室溫中振動2h,4℃中過夜,再攪拌10min,高速離心(3000~15000r/min)30min,1~2次后,即可使用其上清液。吸收一般應在臨用前進行,吸收后之熒光抗體保存冰箱中勿超過2周。染色應作吸收前后之比較,吸收時可先用緩沖鹽水將組織干粉浸濕,離心(3000~15000r/min)30min,除去上清液,再加入熒光抗體進行吸收,以免消耗過多的抗體。
肝粉或新鮮細胞吸收是一種非特異性的消除方法,對熒光抗體的熒光色素和蛋白都有吸附作用。如檢查組織中的病毒抗原時,也可用相同的組織干粉或勻漿沉淀物吸收之。
用臟器肝粉吸收對熒光抗體損失較多,如果根據(jù)Hiramotos氏等的方法將組織的20%生理鹽水勻漿液,用生理鹽水洗2~3次,12000r/min 10min離心沉淀,用其沉淀物吸收其熒光抗體即能完全達到目的,京極方久氏認為這樣吸收對熒光抗體幾乎沒有損失,他們常用此法,效果甚佳,吸收后放置一周左右,用時有必要再吸收一次。
【肝粉的制法】
。1)將若干只小白鼠或大白鼠放血殺死,取出肝臟,用生理鹽水洗2~3次,除去血液,剝掉表面的結(jié)締組織的脂肪。
。2)剪碎,用生理鹽水反復洗滌至無血色止,然后再加生理鹽水少許,用組織搗碎機或勻漿器作成勻漿。
(3)將肝勻漿裝入離心管內(nèi)(1/3左右),交換地用2~3倍量生理鹽水和丙酮反復洗滌各三次,至上清無血色止,每次完畢先用2000r/min離心沉淀15min后,再除去上清液。
。4)最后用丙酮洗滌肝漿,再用布氏漏斗過濾,或離心沉淀,將沉淀物平鋪在潔凈的玻璃板上,37℃烤干(過夜)。
(5)在乳缽中充分研磨,用120目銅篩篩選過后,分裝,密封,低溫干燥保存。
(二)透析法
熒光素如FITC分子可以通過半透膜,而蛋白質(zhì)大分子不能透過,可將未與蛋白結(jié)合的熒光素透析除去。
。1)將標記完畢的熒光蛋白液裝入一透析袋或玻璃紙袋內(nèi),液面稍留空隙,緊扎。
。2)浸入0.02mol/ph 7.1~7.4的PBS中(懸于大于標記物體積約50~100倍的PBS內(nèi)),在4℃中透析,每日更換3~4次PBS,約5~7天,透析液中無熒即可(在熒光光源照射下)。醫(yī)學全在線www.med126.com
。ㄈ)葡聚糖凝膠G-50柱層析法
除游離熒光素可用2×46cm柱層析法,詳細方法參閱第二章 。加入熒光抗體15~18ml(按床體積的5%~10%加樣),使其緩慢滲入柱內(nèi),待即將全部入柱時,加入PBS少許,關閉下口,停留30~40min ,使游離熒光充分進入細篩孔中,然后再接通洗脫瓶開始滴入洗脫液。加入洗脫液一定量后,熒光抗體即向下移行,逐漸與存留于上端的游離熒光素之間拉開明顯的界線,隨著大量洗脫液的不斷加入,二者分離距離越來越大,熒光抗體最先流出,分前、中、后三部分收集,測F/P比值,合格者合并,濃縮,分裝。洗脫液用20%磺基水楊酸測定蛋白(發(fā)生沉淀反應),繼續(xù)洗脫,游離熒光素則相繼被洗脫下來,至洗脫液中無蛋白和熒光素后,此層析柱即可再用。
若用以除去熒光抗體中的游離熒光素和硫酸銨等鹽類,可先在過柱前透析一夜,否則,NH4+太濃,在蛋白未完全洗脫時即出現(xiàn)NH4+,因而影響提純與回收蛋白,一般待洗脫液出現(xiàn)蛋白時,即進行收集,之后出現(xiàn)SO4++(用1%BaCl2檢查發(fā)生白色沉淀)。最后是NH4+,(用納氏試劑檢查呈黃棕色沉淀),待洗脫液無SO4++及NH4+后可再用。
如僅用小量熒光抗體,可用1×20cm的柱層析柱,取2g Sephadex G-50裝柱,即可過濾2~3.5ml熒光抗體。